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MUNDO TILAPIA
PROCESO DE INVERSIÓN, REVERSIÓN , INDUCCIÓN SEXUAL U HORMONADO DE LA TÍLAPIA
 
Las tilapias pueden realizar la puesta todo el año mientras la temperatura del agua sea superior a los 24ºC.
Las tilapias hembras desovan en múltiples ocasiones.
Normalmente, una hembra realiza 8-12 puestas en un año en condiciones favorables de temperatura.
Cada puesta puede contener entre 200 y 2000 huevos.
Después de la fertilización, uno o ambos padres vigilan cuidadosamente los embriones en desarrollo hasta que eclosionan y las larvas alcanzan el estadio de natación libre.
Las tilapias se dividen en géneros principales dependiendo de su comportamiento referido al cuidado parental (Trewavas, 1983):
Tilapia Oreochromis: los huevos fertilizados son cuidados en nidos excavados en el fondo del estanque.
Estos los huevos fertilizados son cuidados por la madre manteniéndolos en su boca
Sarotherodon
Los huevos fertilizados son mantenidos en la boca de la progenitor macho o hembra indistintamente. De los tres géneros,
Oreochromis Spp
Es el más importante en acuicultura debido a que las principales tilapias más adecuadas para su explotación son de dicho género.
El comportamiento reproductor de las especies de Oreochromis se describe a continuación:
ZONA LEK
Es cuando una hembra Oreochromis está lista para desovar, visita la zona de reproducción o lek.
Esta zona consiste en una parte del fondo en la que varios machos han establecido nidos individuales bien defendidos.
Después de un breve cortejo, la hembra deposita los huevos mientras que simultáneamente el macho los fertiliza.
Entonces la hembra recoge los huevos fertilizados en su boca para incubarlos y abandona la zona de apareamiento.
Después de un periodo de incubación de 8 - 15 días, los alevines eclosionados son liberados en aguas poco profundas.
Luego la hembra reanuda su actividad alimenticia y reacondiciona sus ovarios durante 2-4 semanas y de nuevo está lista para una nueva puesta.
Los trabajos sobre inversión sexual , hormonado para la (producción de organismos de un solo sexo), han sido ampliamente desarrollados por numerosos investigadores a través del tiempo y ha sido practicada, en anfibios y aves.
Los primeros intentos de inversión sexual en peces tuvieron lugar en los años treinta, (Yamamoto, 1953).
La inversión sexual ha sido lograda, gracias al conocimiento preciso de los esteroides sexuales tanto andrógenos, como estrógenos, así como de los mecanismos de determinación sexual (Gonocodismo y Hermafroditismo) de las especies que han servido como objeto de experimentación.
Explicaremos brevemente los primeros trabajos realizados en peces, los cuales son comentados por Yamasaki 1983.
Estos trabajos fueron realizados generalmente en peces de importancia en la piscicultura, como son algunos pecilidos, Carassius auratus, Orizias latipes y Salmonidos, como Salmo salar, Salvenus fontinalis, Oncorhinchus kisutch, O. Masou, entre otros.
(Yamasaki op. Cit).
PRIMEROS TRABAJOS SOBRE INVERSIÓN SEXUAL EN PECES
AUTOR AÑO ESPECIE
ESTEROIDE
RESULTADOS
Willer y WWistchi 1942 Enviones de ave y
anfibio. Esteroides masculinosSe logro inversión
Padoa 1937-1939
Salmo irideus Inyección de hormonasfoliculares de ovario y
testiculo.Inversión de hembras ymachos
Berkowitz1938-1941 Levistes reticulatus Administracióndeestrogenos Inversión de hembras
Okeda 1943Orizias latipes Inyección subcutánea de Producción de ovotestes Estilbestrol.
En adultos Okeda 1944 madaka Implantación subcutáneade cristales de andrógeno (Metildehidrostestosterona). Cambio de ovario aovotestes.
Yamamoto1953 Orizias latipes Inmersión de adultos yalimento con hormonas ycrias Estrona Estil bestrol Inversión sexual total a hembras
La experimentación en los pecilidos y salmónidos sirvieron para aumentar la producción y ha sido generada principalmente por Donaldson y Hunter según Yamasaki 1983.
Los trabajos en tilapias (Cichlidae) han sido hechos con los géneros de Tilapia y Oreochromis, con el fin de lograr una producción elevada de biomasa y conocer al detalle el desarrollo gonádico de algunas especies en las que se ha logrado la inversión pura, compararlas con el desarrollo gonádico normal, y conocer los tiempos mas adecuados deaplicación del esteroide lo cual se ha logrado por medio de estudios histológicos, Nakamura, 1973 y Yoshicawa, 1978).
Trabajos sobre producción con individuos invertidos,
son reportados principalmente por Shelton, 1981; Guerrero,1976 y Buddle, 1984.
Los primeros intentos de producir tilapias de un solo sexo, son los hechos por Hickling en1960, por medio de la hibridación; continuando posteriormente Wolfart y Hulata en 1981, quienes han informado sobre especies que al cruzarse producen un 100 % de machos, como fue señalado en párrafos anteriores.
Al mismo tiempo que la hibridación, se desarrollan los trabajos sobre inversión sexual a través del uso de esteroides para producir individuos monosexo.
Despues se hace una síntesis de los trabajos hechos en tilapias sobre reversión sexual.
Los mayores aportes
hechas sobre inversión sexual en tilapia han sido por Shelton y Guerrero, que han generado técnicas especiales de preparación de alimento con hormonas y de preparación de gónadas de tilapias muy jóvenes para tener resultados de la inversión en tres o cuatro meses.
Así mismo Nakamura y Yoshikawa de la escuela japonesa, han descrito a través de estudios histológicos, detallados el desarrollo gonádico de hembras y machos no tratados y tratados, como de organismos intersexuales, que son aquellos en los que no se da la inversión sexual completamente, que presentan caracteres sexuales secundarios mal definidos y en cuya
gónada presentan tejido ovárico y testicular.
Estos estudios se han logrado para Tilapia mossambica, T. nilotica y T. zilli.
TRABAJOS DE INVERSIÓN SEXUAL EN TILAPIAS
AUTOR Y FECHA ESPECIE ESTEROIDE Y DOSIS(mg/kg de alimento) TIEMPO(dias)RESULTADO
Clemens e Inslee 1968T. mossambica Metiltestosterona 30 y 60 Mg. 69 100%-100% deinversión
Nakamuray Takahashi 1973T. mossambica MT 50-100 Mg. 19 – 40100% inversión precoz y reversión a hembras
Jalbert et al. 1974T. niloticaMT 40 Mg. 60 100% de inversión
Guerrero 1975 T. aureaMT 15-30-60 Mg. 21 85-96-100%
Nakamura 1975 T. mossambica Etinilestradiol 50 Mg. 10 - 25 100% de feminizacion
Guerrero 1976 T. mossambica MT 14 – 21 – 2869-93-98%
Guerrero 1976 T. mossambica MT 50 Mg. 40 100% masculinizacion
Hopkins 1979 T. aureaEtinilestradiol 25 Mg. 42 50 % de feminizacion
Jansen 1979T. aureaEstrona y 17 estradiol 30-60-120 Mg. 21 – 3562-50-42% feminizacion
Shelton 1981T. aureaMT 60 Mg. 16 – 1921 – 2883 – 93% 98 – 97%
Owsu Frimpong1981T. niloticaMT 50 Mg. 28 – 42100 – 100%
Macintosh 1985 T. mossambica MT 30 Mg. 30 – 6079 – 94%
Quintero 1985 T. mossambica MT 60 Mg. 2196 – 100%
Así mismo Moreno y cols., 2003, mencionan que los primeros trabajos de inversión sexual se desarrollaron por primera vez en la Universidad de Auburn, en Alabama, EE.UU. Posteriormente, Jalabert y cols., 1974, realizaron la reversión sexual de la Tilapia del NiloOreochromis niloticus, utilizandola hormona 17-α-metiltestosterona (MT), en dosis de 40mg de la hormona incorporada a un kilogramo de alimento balanceado.
En 1978, Tayamen y Shelton evaluaron los andrógenos Etiniltestosterona (ET) y la MT, así como los estrógenos Dietilestilbestrol (DEB) y Estrona (E), Administrados oralmente, encontrando que se podrían obtener poblaciones 100 % machos utilizando ET y MT en una dosis de 30 mg por kilogramo de alimento, durante 30 y 59 días de tratamiento respectivamente.
McGeachin y cols., 1987, realizaron pruebas con la hormona Etiniltestosterona (ET) a concentraciones de 60, 90, 120 y 240 mg por kilogramo de alimento y con la MT a concentraciones de 60, 90 y 120 por kilogramo de alimento, ambas por un periodo de 22 días, obteniendo para ET un 100 % de reversión para los cuatro tratamientos y para la MT99, 98 y 96 % de machos respectivamente.
Vera Cruz y Mair 1994, probaron la MT en dosis de 40 mg por kilogramo dealimento en la Tilapia del Nilo (O. niloticus) a una densidad de 1 000 alevines por metro cuadrado en estanques y hapas, obteniendo porcentajes de machos de 98.4 y 95.4 respectivamente.
Probaron también, una dosis de 60 mg por kilogramos de alimento adensidades de 1 000,
3 000 y 5 000 alevines por metro cúbico en hapas, obteniendo porcentajes de reversión de 91.2, 96.7 y 99.4 respectivamente,
Jiménez Badillo y cols. probaron la efectividad de la MT, la Fluoximesterona (FM) y el Propionato de Testosterona (PT), a una dosis de 40, 1 y 5 mg por kilogramos de alimento, obteniendo un porcentaje de machos de 98.9, 80.6 y 67.6 respectivamente.
Jiménez y cols., 1998, encontraron que una dosis de 5 mg de FM en un kilogramo de alimento en 35 días de tratamiento permite obtener hasta 100 % de machos.
Phelsps y cols., 1992, probaron la hormona FM en dosis de 0.2, 1.5 y 25 mg / kg de alimento, encontrando una producción de 100 % machos en las concentraciones de 1.5 y 25 mg.
Otros datos indican que el tratamiento hormonal se debe iniciar con alevines menores de 11 mm de longitud total, un peso de 0.1 gr y de maximo si realmente es posible de cinco días de edad, para que este sea eficiente, aunque también se han logrado buenos resultados con alevines con una edad menor a los 19 días.
Moreno y cols., 2003, evaluaron la producción de alevines de Tilapia del Nilo masculinizados con la hormona FM a una concentración de 5 mg/kg de alimento, en un periodo de 35 días, en sistemas cerrados de recirculamiento obteniendo un 95.8 % de machos en promedio.
El impulso definitivo a la producción comercial de tilapia evitando el sobrepoblamiento de los estanques y disminuyendo las áreas requeridas para los reproductores y alevinaje, se inicia con los trabajos de Clemens en 1968, quien emplea por primera vez un estrógeno masculinizante, la 17 alfa Metiltestosterona adicionada al alimento (10 - 40 mg/kg) para producir progenie 100 % machos en O. mossambicus, trabajos complementarios en forma independiente con las investigaciones de Guerrero (1975) y Nakamura (1975) adicionando 60 mg/kg de alimento, (Castillo Luis Fernando-Col, 2001).
Vega (1984), aplica el método usado por Guerrero en nuestro país, utilizando la hormona mesterolona, conocida como Provirón, determinando una cantidad de 40 a 60 mg de hormona por kilo de alimento.
Hoy en día se tiene conocimiento que existe gran diferencia entre la hormona Metiltestosterona y la mesterolona, sobre todo en la eficiencia y cantidad, recomendándose 90 mg/kilo de alimento de hormona mesterolona o Provirón a usar en la inducción sexual.
En cuanto a la Metiltestosterona, trabajos realizados por Rodríguez (1989), con la aplicación de diferentes cantidades de hormona en la inducción sexual de tilapia roja(15, 30 y 60mg), dieron resultados fuera de lo común, al concluir que las mejores producciones (y mejor eficiencia de inducción sexual), se dieron con las de menor cantidad.
Esto nos lleva a pensar que aun no esta definido este punto, y mas aún si hoy en día el reducir costos con menos insumos, es lo que se busca para obtener mayores rendimientos.
Así mismo, se tiene conocimiento por experiencia que ya no solo se puede confinar la inducción sexual al uso de sofisticados laboratorios y tanques de concreto, ya que también se puede realizar la inducción sexual en estanques de tierra usando jaulas (hapas), aprovechando la productividad primaria como fuente de nutrientes y vitaminas que no se encuentran en los alimentos balanceados, tal como se comprobó en trabajos realizados porel autor en la ciudad de Piura. Según Marcillo & Landivar (2000), para la producción al nivel comercial de alevinos machos (monosexo) de Tilapia, se aprovecha la condición lábil primitiva en la definición del sexo de estos peces, las características biológicas de las tilapias que permitela aplicación de la inducción sexual son:
a. El sexo en las Tilapias es muy inestable poco después de la eclosión de las larvas, y puede ser afectado por factores externos e internos.
b. El sexo en estos peces se define en un estadio final del desarrollo de la post larva, en una longitud que puede variar dependiendo de la especie de entre 18 y 20 mm (Hepher & Pruginin, 1985) o 15 y 18 mm (Popma, 1987); citados por Marcillo & Landivar, 2000.
La inestabilidad sexual de las larvas recién eclosionados permite poder intervenir para determinar el sexo final en toda o casi toda la población de peces descendientes.
Para la obtención de una población de machos es común la aplicación de una hormona andrógena por vía oral, lo cual nos permite obtener una descendencia de entre 95 y 99% machos, los cuales servirán para un cultivo monosexual con un alto rendimiento en la producción porhectárea en piscigranjas comerciales,
(marcillo & Landivar, 2000) Zoila Abad Marquez, en el 2002 presenta un trabajo en el evento sobre Biotecnología en la Habana, sobre producción de alevinos machos en Tilapia aurea, la cual consiste en la suministración de hormonas femenizantes a los padres (machos), para en hembras (manteniendo los cromosomas de machos), al cruzarlos con machos normales nacerán alevines 100 machos libres de hormonas.
Requerimientos ambientales y alimentación Variable ,Rango Optimo
Temperatura
10 a 42° C.
25 a 31 ° C.
pH 6 a 9
7 a 8 Oxígeno disuelto Mínimo 1 ppm a 5 ppm
Salinidad 0 a 40 °/oo
25 °/oo Alimentación Omnívora, fitoplanctófaga, herbívora.
PRODUCCION ACTUAL DE SEMILLA
En el Perú, Durante la década de la prohibición de la Tilapia, el único centro de producción de alevinos revertidos fue la Unidad de Acuicultura de San Juan en Lima, el cual se concluyo en su construcción en Junio de 1 988, como una unidad experimental, ocupando un área de 4 has aproximadamente, se construyo inicialmente con el propósito de lograr una producción durante todo el año de alevinos revertidos, el cual se lograría aprovechando en los meses de verano la temperatura ambiental de la zona, y en los meses de baja temperatura, con la ayuda de potentes calentadores, que después demostraría un excesivo costo, restringiéndose solo la producción de semilla a los meses de verano.
Esta Unidad se mantuvo trabajando gracias al proyecto de Acuicultura con Aguas Residuales Tratadas que el MTCVC con el soporte técnico del CEPIS/OPS y el financiamiento de PNUD, BM y GTZ de Alemania. Sin embargo, solo se ha mantenido como unidad piloto con una producción anual fluctuante entre 100 y 350 millares de alevinos revertidos.
A partir del 2000 es trasladado a Villa el salvador, donde actualmente es administrado por el Ministerio de vivienda y Construcción. Como respuesta a la demanda suscitada por el cultivo en los últimos tiempos, la Empresa Tilapia Perú SRL. instalo un modulo piloto de producción de semilla en Piura,cuya producción iba en aumento y cuyo único objetivo primordial era el de proporcionar alevinos revertidos de Tilapia durante todo el año así como la de incentivar y promover el cultivo de la Tilapia, lamentablemente por falta de apoyo y en vista que el mercado era muy fluctuante y todavía no existía una política de cultivo nacional de tilapias, tuvo que parar sus instalaciones en el 2002.
Hoy en día existen empresas dedicadas al cultivo de la tilapia que producen su propia semilla como una forma de asegurarse un suministro constante en cantidad y calidad de alevinos revertidos. También existen algunos productores de semilla como la Universidad la Agraria La Molina y La estación de tambo de Mora de FONDEPES que hacia el año 2005 ,importó un pequeño numero de reproductores de la Empresa Colombiana Alevinos del Valle , empresa que se le reconoce el esfuerzo y resultados positivos, por desarrollar nuevas lineas de tilapia
entre tanto entraron al negocio de producción, particulares sin experiencia de los cuales no se conocen con exactitud la calidad de sus reproductores y mucho menos la calidad de su semilla revertida, ofertando en muchos casos en cantidades pequeñas.
Actualmente no existe un centro de producción de semilla de tilapia que maneje cantidades industriales de semilla tanto por instituciones publicas como de las privadas.
ESPECIES CULTIVADAS DE TILAPIA
La Tilapia es uno de los géneros mas recientes dentro de la escala evolutiva (unos 40’000,000 de años), en comparación con otras especies, lo que significa que aun no se encuentra de todo definido, lo que ha dado consecuencia a numerosas especies y subespecies.
Para la Acuicultura comercial, se llegaron a mencionar como las especies másimportantes de Tilapia a: T. rendalli, T. zilli, T. mossambica, T. hornorum y T. nilótica, de las cuales la mas aceptada resulto ser a Tilapia nilótica, tal como lo indican los datos estadísticos de producción de diferentes especies de Tilapia, según FAO, para 1 994.
La razón indudable de la preferencia en el cultivo de la Tilapia nilótica, se basa en que esta posee una serie de atributos favorables para el cultivador, como son: resistencia a bajas concentraciones de Oxigeno, rangos variados de salinidad, resistencia física(al manipuleo), acelerado crecimiento, es fuerte a la acción de los agentes patógenos(enfermedades), aprovecha bien la producción natural del estanque (microalgas), hace buen uso de lossubproductos agrícolas(polvillo, afrechillo, etc.) y de las dietas balanceadas(alimentopreparado).
Las excelentes características que presenta su carne, tales como: textura firme, coloración blanca, poca cantidad de grasas, pocas espinas intramusculares y un buen sabor exótico; hace que se presente como un producto de alta calidad muy apreciado por los consumidores nacionales y extranjeros.
Una variedad nueva que ha recibido particular atención a partir de los 80,
denominado Tilapia roja, (Oreochromis sp.) es un híbrido producto de dos o más especies de Tilapia, cuyo origen todavía no estaba bien documentada.
En general existen un sin fin de antecedentes sobre la aparición de esta nuevavariedad, que no difiere mucho de la Tilapia nilótica cuya coloración natural es gris(llamada también plateada), salvo en la coloración roja y en ciertas propiedades en cuanto al cultivo intensivo.
Hoy en día se sabe que la Tilapia roja es un tetrahibrido, es decir un cruce híbrido entre cuatro especies representativas del genero Oreochromis: O. mossambicus, O. niloticus, O. hornorum, y O. áureos; y en vista de que cada uno de estas especies, aporta al híbrido susmejores características, resulta el pez con mayor potencial para la acuicultura comercial en el mundo.
En general esta variedad resulto ser una buena alternativa; por presentar una coloración de la mezcla del rosa, amarillo y dorada, siendo preferida sobre el resto de las Tilapias, llegándose a denominarla como “La Gallina de Agua”, por su exquisito sabor,fresco y agradable, con pocas espinas y con un buen nivel de proteínas, mas elevada que en el presentada en las carnes roja.
A pesar de todas las cualidades de esta variedad de Tilapia, su cultivo estuvo limitado, debido a que es necesario contar con líneas puras genéticamente, para poder obtener los alevinos de Tilapia roja, lo cual es muy difícil de mantener.
Así al no contar con los organismos puros genéticamente se ocasionarían en los descendientes híbridos, enanismo y colores pocos llamativos al consumidor.
Esto motivo que algunos países como Israel han mejorado estas especies para la producción masiva de híbridos de diversas líneas de Tilapia roja, siendo actualmente la Tilapia roja más cultivada la trihibrida y tetrahibrida, que se manejan con reversión sexual como la nilótica gris.
Recientes investigaciones están tratando de masificar la producción de supermachos (YY) para obviar la reversión sexual, pero esto aun no se ha desarrollado al nivel comercial, es mas no ha dado buenas expectativas.
En nuestro país peru ingresaron en los 60’ lotes de tilapia rendalli, tilapia nilotica.Tilapia hornorum y tilapia mossambica, posteriormente en 1996 ingresan lotes de tilapia roja y tilapìa nilotica con fines de producción y renovación de reproductores.
Otras empresas han ingresado ha partir del 2001 lotes de reproductores de tilapia aurea y tilapia roja con fines de producción, como son Melis Fishery y American Quality Acuaculture.
También se han ingresado semilla de tilapia roja revertida de Ecuador, Colombia, etc. con fines de producción en el país.
MATERIAL GENETICO EXISTENTE EN EL PERU
La producción indiscriminada de alevinos en la Amazonia no permite asegurar que actualmente se cuente con un material genético de buena calidad en esta zona, es mas seria irresponsable trabajar con estas especies degeneradas por falta de control y aun más grave comercializar la semilla de dudosa calidad.
En la costa se trabaja actualmente con una línea Panameña de Tilapia nilótica variedad gris, mejorada en San Juan(Lima) respecto a su rusticidad, ya que ha sido expuesta a condiciones ambientales difíciles durante 5 años, dando como resultado una línea adaptada a nuestra realidad que hasta la fecha no ha reportado problemas.
Igualmentesé esta manejando la línea de Tilapia Roja tetrahibrida, material que inicialmente se trabajo en San Juan y que ahora sé esta reproduciendo en el Hatchery deTilapia Perú SRL.
Como ya se menciono anteriormente otras empresas también han ingresado lotes de reproductores de tilapia roja, tilapia áurea, entre otros para la producción de semilla revertida a machos.
METODOS PARA CONTROLAR LA REPRODUCCION EN TILAPIAS
El principal problema en el cultivo de las Tilapias es su proliferación.
Se reproducen fácilmente a una temprana edad (3 a 6 meses) aun cuando todavía son pequeñas y a partir de ahí tienen desoves múltiples durante todo el año, lo que implicaba una mala producción por competencia de alimento y espacio entre padres e hijos, lo que al final no representaba una buena inversión para los piscicultores.
Así mismo se conocía que en la mayoría de las Tilapias, los machos tienen mayor capacidad de crecimiento que las hembras, aun así se críen por separado, esto asociado a que las hembras llegada la madurez sexual(2 a 3 meses), siendo aun pequeñas se reproduce y en especial en las de incubación bucal, dejan de alimentarse por todo este periodo en que cuidan a sus huevos fecundados hasta a incubación o nacimiento de las larvas(5 a 8 días) y continúan así por unos días mas, existiendo así un gasto de energía dedicada solo a la reproducción, no desarrollando en vista que continúan reproduciendo. Por esto, espreferible el cultivo de una población monosexual de machos, lo cual se puede obtener por diferentes formas.
a.- Cosecha periódica de larvas y alevinos.
Este método consiste en realizar pescas continuas de las crías que se producirían al criar peces de ambos sexos, el cual es efectivo solo en estanques pequeños, en vista que en los estanques grandes estos tendrían mas espacio para esconderse, este método no es muy efectivo, por que siempre va a quedar una pequeña cantidad de alevinos sin pescar, ademásde exigir mucho trabajo, o una labor muy intensiva(diaria) para la pesca de los alevinos, los cuales podrían ser criados o usados como alimento para otros animales.
Lo bueno de este método es que no exige mucha destreza en la labor.
b.- Cultivo monosexual, separación por sexos.
Este método, es similar al anterior, consiste en producir grandes cantidades de semilla oalevinos, los cuales posteriormente son cosechados y sembrados en otros estanques, donde desarrollaran hasta un tamaño apropiado para poder ser sexados (20 a 30 gr.), que según el lugar puede durar de 1 a 2 meses, esto se fundamenta en que el macho desarrolla mas que la hembra, este trabajo exige muchas horas de trabajo continuo, así como una destreza en la labor del sexado, que en muchas ocasiones solo llega a un 90 % de eficiencia, lo que involucra un riesgo al tener peces hembras en los estanques de cultivo.
Los peces hembras pueden ser cultivados o como en la mayoría de los casos usados como parte de la dieta de peces. Cultivo en estanques con altas densidades.
Este método se fundamenta en que ha mayores densidades, los peces no tendrían eltiempo ni el espacio suficiente para dedicarse a la reproducción, al tener grandes cantidades de animales significaría mantenerlos con una buena cantidad de alimento debuena calidad (balanceada), con un flujo de agua de buena calidad y cantidad, así como contar con energía eléctrica con el propósito de proporcionales un sistema de aireación, lo que significaría llevar un buen manejo con personal capacitado.
Este sistema no es muy apropiado, primero por el costo, sobre todo si se va a crías machos y hembras que no desarrollan igual y segundo por que este sistema se podría utilizar en otros métodos más ventajosos.
Cultivo con peces predadores.
Cuando los juveniles de Tilapia se crían en granjas pequeñas y tecnológicamente especializadas, un método apropiado de control de población es el confinamiento de peces depredadores.
El uso de depredadores es muy común en África y en otras partes, donde el cultivo de poblaciones de ambos sexos originan una reproducción indiscriminada, quesignifica una competencia por el alimento y el espacio entre padres e hijos, este sistema también libra de los peces malformados que no son vistos con agrado.
Este método es dificultoso, en vista que se debe conocer el numero apropiado de peces depredadores, que no vayan a dañar a los de cultivo.
Cultivo en jaulas flotantes
Se tiene conocimiento de que el temprano interés por el cultivo de Tilapia en jaulas se baso en la suposición de que el desove natural no ocurriría en las jaulas o, si, ocurría, la descendencia no permanecería en las jaulas de modo que no habría sobrepoblación, como en los estanques. Se supone que los huevos y la esperma pasan a través del fondo de la red.
Este método serviría posteriormente para el cultivo de poblaciones de peces machos (monosexo), con buenos resultados, aprovechándose los lagos, lagunas, represas, reservorios, etc.
Hibridación.
Este método se basa en el cruce de dos especies genéticamente diferentes en ambientes controlados.
Entrecruzamiento
es realizado con la finalidad de:
producir organismos solo machos, los cuales evitan los problemas de sobrepoblamiento y enanismo que se presentan en los cultivos de ambos sexos de Tilapia, ocasionado por la precocidad reproductiva de estos peces; por el incremento de vigor híbrido, con especies que tienen mejores atributos que sus progenitores (longitud, altura, peso, crecimiento, hábitos alimenticios etc.); y por la coloración externa más atractiva de estos peces. Inicialmente los trabajos de hibridación de Tilapia tuvo como objetivo la producción de híbridos estériles, obteniéndose híbridos 100% machos. Para la producción de 100% de alevines machos de Tilapia, se debe contar básicamente con reproductores genéticamente puros, lo cual dado las condiciones son difíciles de mantener y es muy complicado.
Los híbridos de Tilapia
en algunos casos, alcanzan longitudes mayores que las desus padres, tienen ventaja de aprovechar mejor los alimentos, soportan altas densidades en cultivos y atractiva presentación externa (Tilapia roja).
Sin duda no será necesario mencionar lo complicado y tedioso de este método, que necesariamente necesita de personal preparado y capacitado en esta labor, así como contar con una buena infraestructura (Hatchery) Mecanismo de la Hibridación.
La base de la genética
En la Hibridación, radica en que existen diferentes especies de Tilapias con variantes en a distribución de los cromosomas sexuales, existiendo especies contrarias, así:
Similar a la especie humana: XY para el macho (heterogametico) XX para la hembra (homogametica) Donde es el macho el que presenta diferentes gametos y es el que determina el sexo de la descendencia, así tenemos a la T. nilótica, y a la T. mossambica.
Lo opuesto al caso anterior: 21ZZ para el macho (homogametico) WZ para la hembra (heterogametica)La hembra que presenta gametos diferentes, es la que determina el sexo en laprogenie, así tenemos a la T. hornorum y a la T. áurea.
CRUCES DISPONIBLES ENTRE TILAPIAS
1. T. hornorum(macho) xT. nilotica(hembra) ZZXX ZX,ZX,ZX,ZX, 100% machos
2. T. hornorum(hembra) xT. nilotica(macho) WZXYWX, WY, ZX, ZY, 25% 75%25%Hembras, 75% Machos.
3 T. Hibridación de Tilapia Hembra Macho % Machos Año Estado Referencia O. mossambicusO. u.hornorum 100 1960-Hickimg,1960 O. niloticus O. u.hornorum 100
1968 Israel Hepher y Pruginim, 1985 O. niloticusO. aureus100
1967 Israel Yashouv y Halevey, 1967O. aureus O. mossambicus 75
1976 Oaxaca Delgadillo TMD 1975 Pub. O. mossambicusO. hornorum75
1984Nayarit De la Paz O.
1985 Publicado O. mossambicusO. hornorum75
1983GuerreroMercado C.
1987. Con. Per.O. niloticus O. mossambicus 80
1987Tabasco Galvan V,
1987. Con. Per. O. mossambicusO. hornorum83
1982Morelos Castañeda C.
1987, Con. Per. O. niloticus O. hornorum80
1987 Oaxaca Perez Galicia
1987, Con Per. Fuente: Armando Morales (CIB)
1991 y Castillo Luis Fernando(COL), 1994. Arrastre de cadenas.
Payne (1970) (citado por Balarin, 1979),
supone que arrastrando cadena por el fondo, mientras se muestrea, remueve el substrato, causando altas mortalidades en los huevos y alevinos embrollándoos de las distintas especies de tilapia por un daño físico, por enterramiento o como resultado de la desoxigenación causada por el revolvimiento del limo. Por esto, recomienda periódicos movimientos del fondo.
Este método requiere de nuevas investigaciones para lograr una mayor y relativa técnica especializada, la puede ser usada efectivamente en el control de la población de peces que necesitan substrato para reproducirse.
Estanques de cemento
pueden también ayudar a garantizar que las especies de tilapia no incuben, debido a que no pueden construir nidos. Esto actualmente no es del todo practico ya que el autor a sido testigo de la reproducción en estanques de concreto. h.- Ginogénesis.
Balarin (1979), opina que este método puede ser aplicado a las especies de tilapia y sarotherodon, ya que Cross (1976), logro buenos resultados en la carpa herbívora Ctenopharygodon idella.
ESTANQUES EN GEOMEMBRANA
Se sabe que en Mexico, en el Laboratorio Genetico Aquatic, en Jalisco, se lleva una Reproduccion exitosa de Oreochromis Roja, en esta clase de estanques(Castillo Gustavo A.- 2007)
LUZ UV
Este método se basa en la utilización de la luz ultravioleta para
estimular a los huevos a desarrollarse inactivando al esperma.
El resultado es que solamente los cromosomas sexuales femeninos desarrollan y producen hembras normales.
Este proceso también permite la selección de características deseables; sin embargo, a causa del pobre desarrollo de la hembra, es dudoso que pueda desarrollarse esta técnica para tilapia.
Secado de estanques
Chau & Dhari (1967) (citado por Balarin, 1979), describen un método empleado en Indonesia por medio del cual la reproducción de los peces es controlada con la extracción de los alevinos.
El método consiste en el secado del estanque a su nivel mas bajo, donde se mantienen a los alevinos, mientras que a los reproductores se les mantiene en el nivel mas alto.
Esta operación permite extraer a los alevinos para ser utilizados en un nuevo cultivo o para ser mantenidos en estanques para ser clasificados antes de su uso en un reestoqueamiento.
Esta operación se repite quincenalmente y nos permite mantener la del estanque a una densidad establecida. (Meschkat, 1967; citado por Balarin, 1979). j.- Triploidia.
TILAPIA TRIPLOIDE
es un individuo que presenta tres, en lugar de dos, juegos de cromosomas en sus células somáticas, como generalmente ocurre en la naturaleza.
La triploidia se logra cuando los procesos normales de reproducción son interrumpidos de manera tal que se previene la expulsión del segundo cuerpo polar luego de la segundadivision meiótica en la ova.
De esta forma; dos juegos de cromosomas maternos son retenidos en ella, los cuales se fusionan con un tercero aportado por el esperma del macho dando origen a un embrión triploide.
La inducción a la poliploidia, se realiza aplacando choques termicos, este choquetermico inhibe la formación del cuerpo polar secundario y produce un 75 % de poliploidia, lo que ocasiona que estos individuos no sean aptos para la reproducción.
Representación esquemática de la inducción de triploidia.
Producción de peces supermachos (YY machos)
Este método busca reducir o limitar el uso de andrógenos en la producción monosexo de tilapia y produce únicamente descendientes machos (Scout et al., 1989; citado por Hillary, 1997).
Dado que el sexo fenotipico de la tilapia puede ser invertido, esto es posible en elcaso de O. niloticus y O. mossambicus.
La feminización de los machos (XY)
por tratamiento con estrógenos los cuales posteriormente serán cruzados con un macho normal XY, la feminización de machos producen descendientes con proporciones de los siguientes genotipos :
1XX hembra; 2XY machos ; 1YY macho,
este ultimo genotipo es viable (YY macho),
están identificados en algunos estudios (Mair et al., 1991; citado por Hillary, 1997).
Teóricamente únicamente descendientes machos resultan del cruce de hembras (XX) con machos (YY).
Similarmente, la feminización de O. aureus, machos (ZZ hembras) y subsiguiente el cruce con un mecho normal se obtiene como resultado descendientes todos machos(Lahar, 1993; citado por Hillary, 1997).
METODOS
Poliploidia en Tilapias.
• Androgenesis.
• Castración química.
• Irradiación para esterilización.
• Inmersion en esteroide para la masculinización de tilapia: MDHT, MT, ET, TBA, etc.
Reversión sexual o inducción sexual.
Este es uno de los métodos mas usados, para la producción de alevinos machos de Tilapia y el principal método del que vamos a hablar.
METODOLOGÍA PARA INVERSIÓN SEXUAL EN TILAPIAS.
Los pasos a seguir son los siguientes:
a. Selección y características de los organismos para la reversión sexual.
b. Selección del esteroide, dosis y tiempo de aplicación. Métodos de aplicación del esteroide.
C. Comprobación de la reversión sexual.
Selección y características de los organismos para la reversión sexual.
Es deseable que los peces que vayan a ser tratados, sean gonocoricos o hermafroditas, que son formas de definición sexual en peces, la primera se caracteriza por que el organismo presenta la potencialidad de definir su gónada hacia ovario o testículo, y la segunda es en la que los peces poseen tejido ovárico o testicular en la misma.
Las formas de definiciónsexual hacen posible que en los peces el sexo sea manipulable por medio de esteroides. Así mismo, es necesario que la especie presente dimorfismo sexual por medio del cual podrán identificarse los cambios de acuerdo a las características sexuales propias de machos y hembras de las especies que se estudien, así como por el comportamiento sexual que asuman, (Yamamoto, 1969).
En general para todas las investigaciones se han usado crías las cuales aun no absorben el saco vitelino, con la finalidad de que el primer alimento artificial que consuman contenga el esteroide deseado que iniciara el cambio fisiológico dentro del organismo que traerá como consecuencia la inversión sexual de la gónada.
Para Tilapia Oreochromis, han sido utilizadas solamente crías que no excedan los 12 mm de longitud lo cual se debe a que la gónada normalmente se forma en tallas posteriores a la indicada y por lo tanto si el tratamiento no es aplicado en los primeros días de desarrollo, este resulta obsoleto.
Jansen y Shelton 1979, indican que la gónada de tilapia aurea se define entre los 18 y 22 mm que los animales alcanzan entre los 49 y 56 días de edad, Buddle 1984, trabajo con crías de Oreochromis sp. de 11 mm obteniendo buenos resultados.
Selección del Esteroide,
Dosis y tiempo de aplicación.
La reversión sexual de hembras genéticas a machos fenotipicos ha sido llevada a cabo en especies como Orizias latipes, Carassius auratus, Tilapia y Oreochromis, Peocilia reticulata, Zebradanio rerio, Salmo gairdneri, S. Salar, Oncorhynchus kisutch, O. Masou, O. Gorbuschia, O,. Tshawytscha, (Yamazaki, 1983).
Los andrógenos mas usados para lograr la inducción sexual a machos son los siguientes:
17 Alfa metiltestosterona.
11 ketotestosterona.
17 etiniltestosterona.
Testosterona-propionato.
Androsterona.
Metil-androstandiol.
Otros
La potencia de estos exteriores para producir la inversión sexual varia y se ha visto que tienen una mayor eficiencia los sintéticos que los naturales, según indican varios autores expertos en el tema.
Yamamoto & cols. 1953, han calculado el AD50, que es la dosis especifica de esteroide que debe usarse para lograr la inversión sexual completa y el ED50, que es la dosis de esteroides necesaria para producir en los organismos solamente los caracteres sexuales secundarios, mencionan como ejemplo de esteroide natural mas potente a 11 ketotestosterona y como esteroide mas potente entre los artificiales a 17 metiltestosterona.
Yamasaki, 1983; cita los AD50 para las siguientes especies: Carassius auratus 25 mg/kg. T. Mossambica 25 mg/kg y T. Nilotica 30 mg/kg y T. Aurea 30-60 mg/kg (en todos los casos son muy bajas 0.5 a 3 mg/kg.
El esteroide masculino mas usado ha sido la 17 metiltestosterona, ya que es eficaz y fácil de conseguirse.
podemos ver que la mayoría de los autores han utilizado el esteroide mencionado para lograr la inversión a machos.
Los estrógenos mas usados para lograr la reversión sexual a hembras, son los siguientes:
17 –estriol. Estrona Estradiol
Diestilbestrol
Etinilestradiol Estradiolbutiril-acetato.
La feminización ha sido ampliamente lograda con la 17 estradiol en salmónidos, (Johnston & cols, 1979 citado por Yamamoto 1983) dicho autor reporta que al tratar alevines de 5 días de nacidos con una dieta con 20 mg/kg de dieta por 60 días se obtuvo un 100% de feminización en Salvelinus fontinalis.
El mismo autor indica que con la misma especie,haciendo inmersiones de dos periodos de 20 horas por 30 días en agua con una concentración de 250 mg/l del compuesto hormonal y alimentado a los peces por el mismo tiempo con 20 mg/kg de dieta, logra 100 % de feminización.
La estrona
ha sido usada para lograr la inversión en especies como Orizias latipes, Carassius auratus, Salmo gairdneri y Tilapia nilótica.
Esta hormona ha tenido 100% d efectividad, solamente en la primera y la tercera especies mencionadas usando 125 y 100 mg/kg de dieta en 240 y 60 días detratamiento respectivamente; las otras especies presentan porcentajes de inversión de 54 a 95% con dosis que van desde 30 hasta 300 mg/kg de dieta y por periodos de 25 a 180 días.
Para T. nilótica se reportan 100 y 200 mg/kg de dieta de 25 a 59 días de tratamiento para producir de 62 a 78% de feminización.
Los esteroides femeninos sintéticos mas usados han sido
Diestilbestrol, etinilestradiol y estradiolbutiril-acetato. Con T. nilótica, Tayamen y Shelton (1978); citados por Yamazaki 1983, experimentaron dosis de 25 mg/kg de dieta dedietiletilbestrol por 25 a 59 días de tratamiento obteniendo un 73 a 90% de feminización.
El mismo autor indica que Nakamura y Takahashi 1973, logran un 100% de feminización al aplicar a la dieta 50 mg/kg de etinilestradiol por 19 días a partir del primer alimento en animales de 6 a 25 días de nacidos.
El porcentaje de hembras que se obtuvo en Tilapia nilótica al aplicar 25 mg/kg de dieta por 25 a 59 días de tratamiento fue de 73 a 90% y se obtuvo el mismo cuando se aplico a la dieta 100 mg por el mismo tiempo.
se sintetizan la información consultada sobre feminización en tilapias; cabe señalar que a diferencia de la masculinización que se practica ampliamente, la feminización ha sido difícil tanto en la selección del esteroide, como en las dosis que deben aplicarse.
TRABAJOS SOBRE INVERSIÓN SEXUAL A HEMBRAS EN TILAPIAS ESPECIE ESTEROIDE
DOSIS mg/kg dieta TIEMPO (dias)0 0 % AUTOR
Tilapia nilotica
Estrona 100 mg/kg200 mg/kg 25 – 5925 – 5962-78-28.162-78-28
.1Tayameny Shelton 1978Tilapia nilotica Diestilbestrol25 mg/kg100 mg/kg 25 – 5925 – 5973 a 90 73 a 90
Tayameny Shelton 1978T. mossambica Etil Estradiol 50 mg/kg 100 N6 a 25
Nakamuray Takahashi 1973T. aurea Ciproton acetato 25 mg/kg 100 mg/kg 35 35 60 63
Nakamuray Takahashi 1973T. aurea EE + metalibur* 25 mg/kg 100 mg/kg 42 42 50 51
Hopkins y Shelton 1979* Bloqueador de la pituitaria En relación a los tiempos en que se debe iniciar el tratamiento y la duración del mismo, es necesario aclarar que estarán dados particularmente para cada especie, de acuerdo a lostiempos en que se inicien y se termine de formar la gónada.
De tal manera que conociendo esta información el tratamiento se iniciara en el momento adecuado para la especie con que se trabajo y terminara cuando la gónada se encuentre completamente definida.
se aprecia claramente que para tilapia los tiempos de inversión sexual se encuentran definidos y estos se han podido dar gracias a numerosos estudios y estos se han podido dar gracias a numerosos estudios histológicos que han hecho posible saber que en las crías de 18 a 22 mm de T. áurea por ejemplo la gónada ya esta definida.
Por lo cual Shelton y Guerrero recomiendan que se usen animales menores a 12 mm para iniciar eltratamiento.
El tiempo mas largo de tratamiento es de 60 días, pero en el se asegura, si la dosis de esteroide es correcta un éxito total de la inversión. 8.3. Métodos de aplicación del esteroide.
De acuerdo a la bibliografía consultada, se definen tres formas principales de aplicación de los esteroides en peces:
La Inyección subcutánea o introducción de los cristales de esteroide bajo la piel (Okeda1943 y 1949, citado por Yamamoto, 1953),
la cual fue muy usada antes de que se fabricaran los esteroides sintéticos, pero que no se reporta dentro de las nuevas experimentaciones.
La Inmersión de los organismos en agua que contenga los esteroides.
En párrafos anteriores se ha comentado que este tratamiento es frecuente en Poccilidos y en los salmónidos.
Dar alimento balanceado tratado con el esteroide.
Este método es el mas frecuente para la mayoría de las especies en las que se ha hecho inversión sexual y muy especialmente en la tilapia, por lo que es necesario indicar que Guerrero y Shelton (1975),proponen la técnica de preparación de alimentos con hormonas.
Esta preparación es muy sencilla y consiste en disolver en 1 litro de alcohol etílico de 95° la cantidad de hormona que se desee probar.
Esta solución se agrega a 1 Kg. de alimento balanceado y se da un secado de 2 horas a 80°C, después de lo cual estará listo para ser usado.
Algunos autores, como Quintero (1985), han modificado la técnica agregando al alimento preparado como se describió antes, un complejo vitamínico, acido ascórbico y un antibiótico, con la finalidad de que el alimento tenga una calidad deseable.8.4.
Formas de comprobación de la reversión sexual.
La forma mas frecuente de comprobar la inversión sexual es por medio del análisis de los caracteres sexuales secundarios que las especies presentan.
Estas pueden ser modificaciones en las aletas, presencia de accesorios en alguna parte del cuerpo, modificación de las mandíbulas, etc.
Estas características se pueden apreciar cuando los peces han crecido, por ejemplo en la tilapia se puede definir el sexo por medio de la observación de los poros ventrales, ya que las hembras presentan tres y los machos solamente dos y una papila bien definida.
Estos caracteres se definen claramente cuando los animales miden 5 cm. Harper y Pruginin (1985), indican que a los tres cm. pueden serapreciables las diferencias pero que es conveniente teñir con azul de metileno el vientre del pez para tener mayor seguridad de apreciación.
Guerrero y Shelton (1974), desarrollan una técnica para poder observar la gónada en T. aurea de 25 a 35 mm.
La técnica consiste en retirar el tejido gonádico del pez que se encuentra cerca de la vejiga natatoria, ponerlo en un portaobjetos y macerarlo para posteriormente hacer observaciones al microscopio.
El tejido ovárico, ovocitos. Los autores comentan que la observación del testículo resulta complicada y recomiendan que antes de practicar la técnica se haga un buen numero de disecciones hasta localizar el tejido gonádico perfectamente.
Nakamuda (1973) y Yoshikawa (1978), definen el sexo por medio del estudio de cortes histológicos transversales de pez en los que es posible observar la gónada a ambos lados dela vejiga natatoria y se puede ver claramente si el tejido corresponde a testículo o a ovario.
Han tomado muestras cada tres a cinco días, y han observado el desarrollo de la gónada y definen el sexo con seguridad, la desventaja de este método es que los animales deben ser sacrificados
FACTORES QUE AFECTAN LA REVERSION SEXUAL.
La selección inadecuada de los esteroides y su aplicación.
Es necesario seleccionar un esteroide adecuado, que se puede conseguir fácilmente, que sea barato y bastante potente, que no se vea afectado al ponerlo en el agua o al pasar por el tracto digestivo.
Se deben conocer las características reproductivas de la especie que se va trabajar para seleccionar adecuadamente el método de aplicación, como se comento elmas eficaz ha sido la ingestión oral en la mayoría de las especies estudiadas.
Tiempos de tratamiento.
Como se indico anteriormente es necesario el tiempo de definición gonádica de la especie, para iniciar el tratamiento antes de que esta se empiece a formar y es deseable que el tratamiento termine cuando la gónada se encuentre totalmente formada.
Generalmente el tiempo de tratamiento se prolonga con la finalidad de asegurar la inversión.
Para tilapias, como ya se había mencionado el periodo de inicio debe ser entre 9 y 11 mm y el tiempo de tratamiento que se considera el mas seguro son 60 días, Guerrero (1976).
Variaciones de temperatura.
La inversión sexual se da relativamente fácil a la temperatura optima a la cual se desarrollan las especies que se tratan. Pero no todas ellas reaccionan de igual forma a la inversión cuando hay cambios en la temperatura.
Esta también es determinante para el crecimiento de los organismos, y para los fines comerciales que en muchos casos persigue la inversión sexual, es necesario que las crías se desarrollen rápidamente para poder trasladarlas a sistemas en donde el crecimiento sea acelerado.
Shelton y Hopkins (1978) y Shelton y Rodrigues (1981), trabajan variando la temperatura a T. aurea y T. nilotica y obtienen los siguientes resultados: -
Para la primera especie, dando tratamientos por 4 semanas con ET 30mg/60 dias entre 21 y 23°C obtienen 100 % de inversión sexual y una talla de peces de 23.7 mm.
Para la misma especie, dando el tratamiento entre 27 y 29°C por 3 semanas, obtienen 97 % de inversión, con animales de 20.7 mm.
Para T. nilótica tenemos que a la primera temperatura mencionada arriba y con el mismo tratamiento pero, por 5 semanas los resultados fueron 100 % de inversión y 23.5 mm de talla en los peces.
Para la misma especie dando el tratamiento indicado entre 27 y 29°C los resultados son 91 % de inversión con animales de 23.6 mm.
Ahora comparado las dos especies dando el tratamiento solo por 3 semanas a temperaturas entre 21 y 23 °C se obtienen resultados completamente diferentes.
t. áurea 50 % de inversión y animales de 16.5 mm y para T. nilótica 99 % de inversión y crías de 16.8 mm.
Las experimentación anterior, nos indica lo importante que es la temperatura, Yamamoto (1969), comenta que los mecanismos de definición sexual son afectados por la temperatura y que resulta favorecida la proporción de hembras en diferente especies, cuando recién nacidas se les pone a temperaturas mas altas de las que requieren para su desarrollo.
Tasa de alimentación.
Es recomendable alimentar a las crías con un 10 a 12 % del peso total de la biomasa, en diez o cuatro veces al día con la finalidad de mantener los niveles de esteroides en una proporción constante a lo largo tratamiento, Shelton (1978).
El mismo autor, comenta que cuando el crecimiento de las crías no es parejo pueden encontrarse algunas diferencias en la respuesta a la inversión sexual.
Cuando se alimenta en esta forma es necesario llevar uncontrol de peso longitud para hacer los cambios adecuados en la cantidad de alimento.
Dentro de la bibliografía revisada algunos autores recomiendan alimentar a saciedad y sin control de peso, con la finalidad de evitar el manejo de las crías que trae como consecuencia mortalidad.
TECNOLOGIA DE PRODUCCION.
Estanque de reproducción.
Los estanques usados para la etapa reproductiva varían en tamaño de entre 100 a 500 m2 existiendo aun de mayores tamaños, prefiriéndose los más pequeños por ser más manejables (100 m2), así nos permite tener lotes diferentes de reproducción a la ves, siendo la profundidad media de un 1 m. es necesario contar con un buen suministro de agua de buena calidad, el fondo del estanque debe presentar una caída hacia el desagüe (pendiente de 1 a 5 %), para permitir un desaguado rápido y completo del estanque cuando se requiera, el ingreso del agua debe ser preferentemente en caída y el desaguado debe ser por una estructura manejable(arqueta, monje, tubo flexible).
a.Preparación y llenado del estanque.
Antes de realizar el llenado de los estanques, se debe proceder a la poda de lavegetación, el cual circunda el estanque e evita que se erosionen los diques, porque el acceso para la pesca, así como reduce el espacio y sirven de refugio para insectos que se alimentan de alevinos.
Así mismo se debe limpiar el fondo del estanque ysi es necesario nivelarlo.
Se debe evitar en lo posible el ingreso de peces e insectos depredadores, colocando una rejilla en el ingreso de agua, en zonas de selva es preferible colocarlo en la toma de agua colocando una manga de malla fina para evitar que se obstruya constantemente.
También es recomendable instalar una malla fina en la salida del agua del estanque, para evitar el escape de las larvas o los reproductores.
En lugares con presencia de aves, es recomendable instalar una red que cubra el estanque o una red al contorno que evite que las aves intenten capturar a los reproductores.
Luego de la preparación del estanque se recomienda mantener un nivel del agua entre 50 a 70 cm, dependiendo de la zona (Temperatura ambiental) y del tamaño del estanque.
El agua debe ser de buena calidad y se debe mantener un ingreso constante paraproporcionar las mejores condiciones para los reproductores; la composición de agua debe ser la apropiada para el crecimiento de los peces y que su temperatura promedio no sea menor de 22 grados C, ni superior a 32 grados C.
La salinidad debe ser inferior a 10 partes por mil.
b.Selección de reproductores.
Uno de los aspectos más importantes en todo sistema de producción piscícola en gran escala, es la selección y el manejo de los reproductores.
Los caracteres externos deimportancia dentro de la selección de los reproductores en general son:
• Buena talla y peso.
• Ejemplares saludables.
• No debe presentar heridas o ulceraciones en el cuerpo.
• Ausencia de deformaciones en el cuerpo o en las aletas.
• Libre de parásitos.
• Distribución normal de escamas.
• Buena coloración.
Un buen reproductor debe sobrepasar los 200 gramos de peso (para hembras).
.Relación sexual.
Se recomienda trabajar con una relación de 2 a 1 de hembras con respecto a macho, e incluso una relación de 3 a 1 daría buenos resultado.
El tamaño entre ambos sexos debe ser lo mas pareja, se suele cruzar a las hembras con machos de menor edad, con la finalidad de evitar el maltrato del macho a la hembra.
d.Duración del ciclo de reproductores.
Efectuada la instalación de los reproductores en el estanque de reproducción, el tiempo establecido para la obtención de larvas va ha depender de las condicionesambientales (temperatura, radiación solar, etc.), que normalmente es de 9 a 13 días.
Durante el periodo de reproducción se le suministra a los peces alimento balanceado con mas de 30% de proteína, tratando en lo posible de no molestarlos.
e.Captura de larvas. y Captura diaria.
Transcurrido de 9 a 13 días, se procede a la captura diaria, dependiendo de la cantidad de larvas que se observe, hasta que se aprecie una significativa reducción de producción de larvas (30 a 60 días), tiempo en el cual se procede a la desmantelación de los reproductores para someterlos a un periodo de descanso(separados por sexos), la pesca se realiza pasando una red pequeña por todo el contorno del estanque.
Esta operación es más laboriosa, pero garantiza mas del 95% de larvas con buen tamaño para la reversión(menos de 14 mm).
ii. Captura total.
Este método consiste en esperar unos 21 días, cuando el día de mayor producción de larvas ocurre para proceder a un vaciado del estanque y el retiro de los reproductores, para capturar las larvas en un solo día.
Este método es menos laborioso y permite recolectar mas larvas en un solo día, pero existe una marcada diferencia de tallas entre ellas.
.Selección y conteo de larvas.
Las larvas recolectadas son recogidas en recipientes (tinas), procediendo a aclimatarlas al agua de los tanques de reversión, acto seguido se limpia de impurezas (plantas, restos de alimento, excremento, etc.) y de insectos (motonectas, chinches, larvas de liberula, etc.).
Las larvas con mas de 14 mm son separadas (podrían tener el sexo definido), utilizando una pequeña coladera, o en el caso de existir mucha diferencia detallas, utilizando un seleccionador o clasificador (de malla metálica), con un diámetro de3.2 mm.
Posteriormente son contadas utilizando diferentes técnicas: de uno en uno, de 5 en 5, por volumen, por comparación, etc.
g.Transferencia de larvas a los tanques de reversión.
Las larvas recolectadas son instaladas en tanques de cemento a razón de 5 a 10 millares por metro cúbico. Allí se mantienen con un flujo continuo de agua cristalina (agua potable) y aire insuflado (Blower) durante un periodo de cuatro semanas.
Diariamente se recambia por lo menos el 20% del volumen de agua y se extraen con sifón los residuos orgánicos (restos de alimento y excretas) y peces muertos.
Un alimento balanceado en polvo (45% proteína) es elaborado para la alimentación de las larvas, agregando en este la hormona que permitirá la reversión sexual.
Dosis crecientes se proporcionan durante las cuatro semanas, aplicando seis raciones diarias con una frecuencia de dos horas durante el día.
La supervivencia en esta etapa varia de 8 a 22%.
Los alevinos terminan la reversión con 0.3 – 0.5 gr. de peso promedio, y en la mayor parte de los casos pasan a una pre-cría hasta su venta.
No es preferible mantener pre-crías largas, debido al poco espacio y competencia entre ellos que originarían mortalidades considerables.
En el caso de pre-crías largas
se recomienda hacerlos en los estanques de tierra o en tanques de mayor tamaño, se debe aclarar que los alevines con mayor pre-cría tienen un costo superior al de los que recién terminan la reversión, así como mencionar que para embarques a provincias y viajes largos no es recomendable hacerlos con animales precriados (en todo caso disminuir el numero por bolsa).
.Administración de la hormona para la reversión sexual.
Históricamente, las operaciones de la reversión química del sexo estuvieron restringidas a las instalaciones con agua limpia, o en tanques internos para evitar la proliferación de microalgas que pudiesen disminuir el consumo de solo el alimento con hormona y así disminuir la eficiencia de la reversión sexual.
Sin embargo hoy en día se sabe que la presencia de microalgas en los tanques de reversión (proporcionada), no interfiere en la acción de la hormona, es mas proporciona ciertos nutrientes que no se encuentran en los alimentos balanceados, que hacen que las larvas desarrollen más rápido y sanas.
i. Ingredientes utilizados en la dieta para la reversión sexual.
Los insumos a usarse para la elaboración de la dieta con hormona deben ser fáciles de adquirir en los mercados locales, para contar con ellos siempre que se necesiten, salvo la hormona que es más difícil de adquirirse, ya que solo se expenden en el extranjero, el cual se debe realizar con anticipación.
Actualmente se usan diferentes insumos y alimentos para peces, los cuales deben ser molidos a polvo, tamizados antes y después de la preparación del alimento, garantizando un tamaño homogéneo de las partículas del alimento, los cuales podrán ser cogidos por las larvas.
Un ejemplo practico de alimento para la reversión sexual es una mezcla de 4 harinas: trigo, maíz, soya y pescado(45 % de proteína), previamente la hormona es diluida en alcohol (60 mg/0.5 litro.), se mezclan y se deja secar a temperatura ambiente, removiendo de vez en cuando para un secado parejo hasta dejar de percibir el olor a alcohol.
j. Control en los tanques de reversión.
Es preciso una observación diaria de las larvas durante la reversión sexual, para vigilar su comportamiento y detectar con anticipación la presencia de parásitos, que nos permita tomar las medidas del caso a tiempo.
Es también necesario llevar un control de los parámetros físico químicos delagua(Temperatura, Oxigeno, pH, etc.), así como un registro diario del alimento suministrado desde el inicio de la reversión sexual.
Inducción sexual en hapas y estanques de tierra.
Con el fin de reducir costos y lograr la inversion sexual en lugares alejados, se logrA desarrollar la inversion utilizando hapas en estanques de tierra, obteniendoce datos similares a los realizados en tanques de concreto y en ciertos variables como el tamaño final, los datos fueron positivos.
Por experiencia propia se conoce que ya no solo se puede confinar la inducción sexual al uso de sofisticados laboratorios y tanques de concreto, ya que también se puede realizar la inducción sexual en estanques de tierra usando jaulas (hapas), aprovechando la productividad primaria como fuente de nutrientes y vitaminas que no se encuentran en los alimentos balanceados, tal como se comprobó en trabajos realizados en la ciudad de Piura y continuación se comenta brevemente tal experiencia.
Al termino del tratamiento, a los 28 días se realizo la cosecha de las hapas, obteniéndose los siguientes resultados:
Para las hapas elaboradas con malla larvera roja,
se obtuvo una sobrevivencia de 30,4 %, las tallas eran disparejas (chicos, medianos y grandes) con una talla máxima de 1,8 cm a 2 cm.
Para las hapas elaboradas de malla tipo mosquitera verde,
se obtuvo una sobre vivencia de 84 %, con tallas parejas (95 % grandes y 5 % chicos), con una talla en promedio de 2,5 cm aproximadamente.
Es notable la diferencia significativa existente en los datos obtenidos en promedio entre los dos tipos de hapas, la mortalidad desde la segunda semana y la variación de tallas en las hapas elaboradas con malla larvera roja se debió al bloqueo de la red por las microalgas que se fijaban a ella, el cual no permitio una adecuada circulación del agua y alas no tan apropiadas condiciones que se tuvieron en los estanques como son:
poco recambio de agua, 8,5 de pH,
una salinidad de 11ppm, 27° C de Temperatura en promedio
y una variación de 4,5 a 1 ppm de O2.
Aun con estos factores las hapas elaboradas con malla tipo mosquitera dieron resultados mas favorables, a la ves que por el hecho de tener mayor abertura de malla no se bloquean con las microalgas, permitiendo una mejor circulación del agua dentro de ella, lo que hace suponer que si se reduce la densidad a 5 000 larvas/m3 y se mejora la cantidad y calidad del agua, se podría obtener mejores resultados, sobre todo en la supervivencia.
Lamentablemente, no se pudo realizar una comprobación de la eficiencia de reversión a machos en los alevines, pero se estima un porcentaje de 80 a 95 % para hapas, 93 a 97 % para Tanques de Concreto y un 75 a 95 % para estanques de tierra a diferencia de los 96 % de eficiencia dado para los tres por Espejo, 1997; citado por Vergara, 2001.
DESCRIPCIÓN DE LOS ANDRÓGENOS
Los andrógenos son compuestos derivados del ciclo pentano – per hidrofrenanteno, se encuentran estructurados por cuatro anillos unidos entre si, de designación literal; losanillos: A y B y C se encuentran conformados por seis átomos de carbono, mientras que elanillo D contiene cinco átomos de carbono.
La numeración de los átomos de carbono seefectúan correlativamente, (marcillo & Landivar, 2000).
Los andrógenos pertenecen al grupo de los compuestos denominados C19 derivados del androstano.
La testosterona, hormona sexual masculina en forma natural se caracteriza por presentar un grupo hidróxilo en la posición de C17, este compuesto sirve de referencia para la síntesis de algunos compuestos importantes que presentan efectos diferentes:
1. Mediante la esterificación con el ácido propionico o con el ácido enántico seobtiene compuestos androgénicos de elevada actividad con diferente duración de su efectividad
.2. Introduciendo un grupo metilo en posición C17 se obtiene la metiltestosterona, andrógeno de gran efectividad por vía oral
. 3. Introduciendo un grupo etinilo en la posición del C17, y además eliminando en forma simultánea el grupo metilo en la posición de C19, se obtiene un gestágeno, que también presenta efectividad por vía oral.
Los órganos testiculares y los ovarios segregan testosterona (Ufer, 1972).
ACCION HORMONAL
Los andrógenos actúan sobre los órganos y los caracteres sexuales secundarios, actúa en el sexo masculino, así como también en el femenino. Su acción fundamental consiste en el desarrollo de los caracteres sexuales secundarios; comportamiento reproductor; maduración de los gametos en los machos (Lagler & cols., 1984; citado por Marcillo & Landivar, 2000), los andrógenos también contribuyen al crecimiento general y a la síntesis de proteína tal como acontece con las proteínas miofibrilares, presentado por la mayor masa muscular de los machos en relación a las hembras en muchos de los 38 vertebrados (Eckert & cols., 1992; citado por Marcillo & Landivar, 2000).
En el sexo femenino se produce el fenómeno de virilización y puede inhibir y suprimir la maduración de los folículos ováricos.
ANDRÓGENOS UTILIZADOS EN EL PROCESO DE LA INDUCCIÓNQUÍMICA DEL SEXO.
Dentro de la tecnología de producción de alevines monosexo de tilapia, se utilizan los andrógenos que son activos por vía oral, con dosis que varían entre 40 a 80 miligramos por cada kilo de alimento, dependiendo del tipo de hormona empleada, así:
• Metiltestosterona (Mt)
• Etiniltestosterona (Et)
17α - Metiltestosterona
17α - hidroxi
17 α - metil 4
androstan 3 – ona).
-Es el andrógeno que mas se emplea en los procesos a escala comercial, por las ventajas que presenta este fármaco, como es la inmediata disolución de sus cristales en el alcohol.
la 17 – alfa – metiltestosterona,
se caracteriza porque posee el grupo metilo en el carbono17.
Cabe mencionar que este medicamento se encuentra aprobada por la FDA de los EE.UU.
Estructura química de la 17 alfa-metiltestosterona Fuente : Tomado de A. Arias, 1995; citado por Marcillo & Landivar, 20001234567910812111413171516OHCH3 (17α - hidroxi – 17 - α - etil 4 – androstan 3 – ona).-
La etiniltestosterona,
da resultados análogos a la Metiltestosterona, se caracteriza porque requiere de varias horas para que los cristales puedan disolverse en el alcohol con temperaturas del medio ambiente (Hepher y Pruginin, 1985; citado por Marcillo & landivar, 2000)
Estructura quimica de la etiniltestosterona
Fuente : Tomado de A. Arias, 1995; citado por Marcillo & Landivar, 2000Arias (1995; citado por Marcillo & Landivar, 2000), demostró la eficacia de Mesterolona (ME), como hormona sustituta de la 17 α– Metiltestosterona, la Mesterolona (17α - hidroxi – 1 - α - metil 5 – androstano 3 – ona), tiene la característica de poseer un grupo metilo en el carbono 1 -HCH2– CH3 3. Estructura química de la mesterolona Fuente : Tomado de A. Arias, 1995; citado por marcillo & Landivar, 2000
EFECTIVIDAD DE LA INDUCCION SEXUAL EN LOS CHiLIDAE
El éxito de la inducción química del sexo de las tilapias, está basadoprincipalmente en los resultados positivos obtenidos con O. niloticus, con el mismo procedimiento hormonal se ha tratado otras variedades de tilapia como:
O. mossambicus,
O. aureus,
O. hornorum y el híbrido rojo de tilapia.
EFECTOS QUE TIENE EL CONSUMO DE PESCADO TRATADO CON HORMONA EN LA ALIMENTACIÓN DEL HOMBRE
El justificativo uso de los compuestos androgénicos en la inducción química delsexo en las tilapias, que establece que sea apto para el consumo humano, se basa en las consideraciones de la cantidad total de hormona que es suministrado a los peces durante el proceso y la tasa de eliminación, finalizado el tratamiento de la inducción, es pequeña en comparación con las dosis normales usados en los humanos, (Marcillo & Landivar, 2000)
La dosis mínima recomendada de testosterona, para el hombre es 100 veces mayorque para el total consumido por la tilapia durante la inducción química del sexo.
En realidad, la mayor cantidad de la dosis de hormona es metabolizada y eliminada antes que el pez alcance su tamaño comercial; paralelamente el hígado convierte al compuesto HCH3 androgénico en sustancias mas solubles, y al final es eliminado en la orina y en la bilis, (Marcillo & Landivar, 2000).
Cuando la Metiltestosterona es suministrado oralmente durante el tratamiento de la reversión química del sexo, el 90% de la hormona es excretado en las 24 horas siguientes, y solo 3 semanas después menos del 1% de la hormona permanece en el cuerpo del pez, (Marcillo & Landivar, 2000).
En el engorde a tamaño comercial, alevinos, juveniles y adultos, el pez continua eliminando el remanente de 1% de la hormona.
En el momento de captura de poblaciones inducidas, el contenido de hormona es insignificante en los peces, si se toman en relación con la cantidad de hormona que los peces presentan en un medio natural para un adulto macho de tilapia.
El uso de Metiltestosterona para la reversión química del sexo de los peces para consumo ha sido aprobado por el departamento de drogas y alimento de los EE. UU, (Popma & Greem, 1990).
VENTAJAS Y DESVENTAJAS DE LA INVERSION SEXUAL.
Ventajas.
- Se ejerce un control en la tasa de reproducción con lo cual se evitan perdidas en la producción y la presencia de crías.
- La
inversión sexual a machos
es adecuada para la producción, debido a que los machos de tilapia tienen un crecimiento mas acelerado que las hembras.
- La inversión sexual a hembras,
es de gran ayuda para obtener líneas de machos con características deseables para la producción como es el caso de los llamados “súper machos”
- El costo del tratamiento es bajo y fácil de aplicar, siempre que se cuente con la experiencia apropiada.
- Los resultados se obtienen en un tiempo relativamente corto.
- Las hembras no se pierden, como en el metodo de selección de sexos, para cultivomonosexo..
- Se puede usar poblaciones con altas densidades de peces tratados.
La inversión sexual no tiene resultado al 100 % en todas las especies de tilapia utilizadas en acuicultura y en muchos casos un rango de 95 a 99 % es aceptable, es irreal hablar de 100 % de eficiencia en el campo.
Sin embargo según el tiempo de crianza se da el % de hembras aceptables por cultivo:
• 3 meses 10 %
• 5 meses 5 %
• 10 meses 0 %
• Cultivos en Jaulas o con predadores 20 a 50 %
- Si hay fallas en la inversión sexual a machos para propósitos de producción a gran escala hay perdidas, ya que un 5 % de hembras en la población afecta el rendimiento pesquero, Anderson y Smitherman (1978), siempre que el cultivo se realice en un solo estanque, lo que no se aplica si se realizan el cultivo en diferentes estanques ya que al pasarse de un estanque a otro se van eliminando los peces que no se desean, Hurtado (2001)
- Se desconoce con precisión el efecto que puede causar sobre los humanos elconsumo de peces tratados directamente con diferentes esteroides, Shelton y Hopkins (1978).
Actualmente se sabe que ciertos Andrógenos no causan ningún efecto ya que son eliminados por el pez antes de llegar a la talla comercial.
MERCADO ACTUAL Y POTENCIAL DE SEMILLA.
Para el 2001, se llego a estimar una demanda de mas de un millón de alevinos para la zona de la Costa, debido principalmente a los proyectos ejecutados en Tumbes, Piura y Lima. Para el 2004, debido a malas experiencias con los Langostineros y la instalación de Hatcherys por empresas dedicadas al cultivo industrial de tilapias, redujo la demanda de semilla producida por particulares.
Sin embargo el constante interés de los peruanos por latilapia, el interés de diversificar y obtener el máximo rendimiento de su tierras, al integrarla acuicultura a la agricultura, al turismo, etc. hacen cada ves mayor la necesidad de contar con semilla para actividades pequeñas y medianas que recién se inicien.
la selva se mantiene la misma demanda de años anteriores y se estima que actualmente se están cultivando alrededor de 8.5 millones de alevinos, ya que se trabaja con un tamaño comercial de solo 200 gramos en promedio.
Pensamos que la Selva Alta tiene un alto potencial para producir 15,000 TM en el año 2020, especialmente si se logra entender que es uno de los cultivos alternativos más viables.
Mejorando la tecnología para obtener peces de 500 gramos, proyectándose un requerimiento de otros 40 millones de alevinos. Finalmente podemos agregar que nos hace falta contar con laboratorios que produzcan semilla en forma industrial, en cantidad y calidad avalada por el sector publico y privado.
BIBLIOGRAFIA. Disponible por el autor.
Hurtado T. |
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